用于将细菌区分成革兰氏阳性或革兰氏阴性之染色液。传统革兰氏染色方法对于脱色时间较难掌控，往往因为脱色过度，而将应该是Gram阳性菌误染成Gram阴性菌，其所花费的时间更长达4分钟之久。快速革兰氏染色液可以大幅缩短染色时间，整个染色过程只需1分钟，而且几乎没有伪阴性惰形发生，是目前实验室最佳的选择。试药内容：1.结晶紫(Crystal Violet) x 1 250ml2.碘液(Iodine Solution) x 1 250ml3.脱色剂(Decolorizer) x 1 250ml4.沙黄溶液(Safranin Solution) x 1 250ml操作方法：1. 加结晶紫，染色10秒，之后水洗，甩干。2. 加碘液，染色10秒，之后水洗，甩干。3. 以脱色剂脱色10~20秒，之后水洗，甩干。4. 最后加沙黄溶液，复染10秒，之后水洗。5. 以滤纸吸干或在空气中阴乾后，镜检。结果判定：Gram阳性菌(Gram-Positive)呈紫色。Gram阴性菌(Gram-Negative)呈红色。
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2019
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1、操作步骤 （1）取下显微镜的防尘罩，接通电源，开启电源开关，根据玻片性质调整内置照明灯光亮度及光圈大小，使视野亮度处于合适范围； （2）将事先准备好的玻片放到载物台上，用标本片夹持器夹好，转动移动手轮使等观察样品大致位于物镜正下方； （3）拉开显微镜的电子眼，并打开电脑上的工作站，将屏幕调整到合适大小移到中间； （4）先用低倍物镜（4倍）观察样品，转动粗准焦螺旋和移动手轮，把样品移到视野中间并调至清晰； （5） 转动转换器，使高倍物镜（10倍）对准样品，调节细准焦螺旋，使视野清晰；如果样品稍有偏离视野中央则调节移动手轮把样品调到中央； （6） 再次转动转换器，使高倍物镜（40倍）对准样品进行观察，方法同10倍物镜操作方法；此时视野亮度可能会变暗，应当调节内置照明灯光亮度及光圈大小使视野亮度处于合适范围； （7） 观察完样品后，取下载玻片，先将聚光器降下，再将物镜转成“八”字形，转动粗调节器使镜筒下降，以免接物镜与聚光器相碰，并将镜筒缓缓下降到最低处，关掉电子眼及工作站，关闭电源，罩上防尘罩，将显微镜归位。 2、日常维护 （1）显微镜要放在干燥的地方，不能在阳光下暴晒和使用； （2）不要随意取下目镜，以防止尘土落入物镜，也不要任意拆卸各种零件，以防损坏...
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2019
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摇出式聚光镜（Swing out condenser）在使用低倍物镜时（如4X），由于视场大，光源所形成的光锥不能充满整个视场，造成视场边缘部分黑暗，只中央部分被照亮。要使视场充满照明，就需将聚光镜的上透镜从光路中摇出。
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09
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TB菌因细胞璧富含脂质，因此能抵抗盐酸酒精的脱色。TB Stain结核菌染色液为化学染色剂，主要用于对结核杆菌等抗酸性菌的化学染色。抗酸染色一般有二种常用方法：1)硷性复红法(Ziehi-Neelsen法)；2)萤光染色金胺O法(也称为金胺O-罗丹明法)。本染剂系应用的方法原理改良而成，染色过程不必加热。结核菌、麻疯杆菌等抗酸性菌，因其菌体表面有一层类脂或脂质之皮膜不易着色，但一经着色后，酸及乙醇的作用亦是不容易把它脱色。利用此特性并以增强的染色予以染色，然后再以酸及乙醇加以处理，使其脱色后对比染色，此时抗酸性菌仍是固定着最初染上的颜色(红色)，也就易于监别。结核菌染色液 试药内容：1. Carbolfuchsin x 1 250ml(碳酸复红溶液)2. Acid Alcohol x 2 250ml(酸性酒精)3. Counter Stain x 1 250ml(复染剂)操作方法：1. 涂片经火焰固定，加碳酸复红溶液于涂片上，染色10min。(不需加温步骤 )2. 放冷后，水洗。(水洗之后，尽可能将水份沥乾或以滤纸吸干)。3. 加酸性酒精脱色2min。4. 水洗。(假设标本面还可以看到残存红色时，再添加酸性酒精至完全脱掉红色为止)。5. 加复染剂染色10~30秒，水洗、干燥、镜检。结果判定：抗酸性菌(为结核菌)呈红色，其它细菌及细胞呈蓝色。结核菌...
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1、相差物镜的调换安装从物镜转换器上拆下普通物镜，旋入相差物镜，与普通目镜配套使用。 2、转盘聚光器的调换安装旋转聚光器升降螺旋，把普通明视场聚光器至最低位，旋松固紧螺丝，卸下聚光器。把转盘聚光器安放到相应位置上，旋紧固紧螺丝，转动聚光器升降螺旋，使聚光器升至最高位置。转盘聚光器的标示孔，朝向操作者。此时，转盘聚光器上面的聚光镜部分，进入光路；下面的环状光阑转盘，可视需要转动使用，把与物镜匹配的环孔旋入光路，使之处于转盘聚光镜下。 3、把绿色滤色镜放入镜座的滤色镜架上转盘聚光器调换安装后，要进行合轴调中，使聚光器的光轴与显微镜的主光轴合一。其步聚如下： （1）把转盘聚光器的环状光阑调至“0”位，明视场照明的普通可变光阑进入光路。 （2）旋转聚光器升降螺旋，聚光器升至最高位。 （3）接通照明光源，使视场明亮。 （4）把被检样品放到载物台上，用低倍（4×）物镜聚焦。 （5）缩小镜座上的视场光阑开孔，至最小。 （6）从目镜观察，在暗视场中可见一缩小的、明亮的、多角形的视场光阑图像。 （7）转动转盘聚光器的两个调中杆，推动聚光器，把视场中的明亮的多角形的视场光阑图像，调至视场中央。 （8）开放视场光阑至视场同大，视两者周边是否完全重合；否则，复用调中螺杆，使聚光器精神调中。...
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DIC 与相差成像技术的最根本区别体现在它的光学基础上。通过比较可知，这两种“对比增强型”成像效果区别明显，但同时又有很多相似之处。扩展阅读：倒置显微镜微分干涉观察时的影响因素有哪些？ 在相差成像中，图片的密度区别源于光通过样品时的路程长短不一。灰背景正相差下，那些较厚的区域（光程长）在视野中呈现较周围暗的效果；相对的，较薄的样品或折射率低于周围介质的样品在视野下则要亮些。 在DIC 成像技术中，情况又有些不同。DIC 成像时，决定对比度的首要因素是光通路中的梯度变化（即光波传播方向上的变化率）。梯度大的区域在视野下对比度高，并呈现出“伪立体”效果——这是DIC 的特征效果；而梯度较小的区域，如扁平的上皮细胞，则不会有很明显的对比度呈现，而且灰度值通常与背景相同。除了这两种成像技术机制上的差异，它们还有很多其他方面的不同。如Figure 1 所示，为DIC 及相差技术下三组相同的样品利用数字相机获得的图片。图中第一行采用的是DIC 成像技术，下面一行采用了相差成像技术。我们可以看到，Figure 1(a) 图中细胞及细胞核的周围有一圈光晕存在，而Figure 1(b) 中则不存在这一现象。DIC 研究表明（方法未列出），在细胞的表面有细菌分布，而利用相差技术则检测不到这一效果。 ...
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